EasySep™小鼠TIL（CD45）正选试剂盒
TeSR™多能干细胞培养基
适用于人胚胎干细胞 (Human ES Cell) 和诱导性多能干细胞 (Human iPS Cell) 的重编程、维持和分化的无饲养层培养基。
TeSR™ 系列无饲养层培养基采用严格筛选的材料生产，确保每批次之间具有最高的一致性和实验可重复性，从而帮助您减少研究中的变异。每款培养基都基于James Thomson实验室已发表的配方1-3，可以使研究人员维持高质量的人多能干细胞（hPSC）培养系统。这些产品提供了一个连续的TeSR™培养基工作流程，涵盖了从诱导性多能干细胞（iPS）细胞的生成，到胚胎干细胞（ES）和iPS细胞的维持、分化和冻存。
eTeSR™
配方:
无血清
应用:
无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增，优化用于单细胞传代。
特点/优势:
- 加强缓冲体系、更稳定的FGF2, 代谢物优化，在支持细胞质量的同时允许更灵活的换液方案。
- 在常规单细胞传代过程中，提高hPSC培养的遗传稳定性。
- 增加细胞得率，同时减少与单细胞传代或高密度培养的相关的压力。
- 消除自发性分化。
mTeSR™ Plus
配方:
无血清
应用:
无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。
特点/优势:
- 加强缓冲体系，使用了更稳定的FGF2，在支持细胞质量的同时允许灵活的换液方案。
- 更好的细胞培养形态和细胞生长特征。
- 与CloneR™联用时提高单细胞存活率。
- 与已建立的基因组编辑和分化方案完全兼容。
- 符合相关cGMP标准生产，实现从基础研究到药物及细胞治疗开发之间无缝衔接。
TeSR™-AOF
配方:
无血清、无动物源成分
应用:
无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。
特点/优势:
- 选择二级无动物源成分生产的培养基，从而降低原料风险。
- 支持高质量的克隆形态、牢固的附着和稳健的细胞扩增。
- 成分稳定，包括 FGF2，在支持高细胞质量的同时，允许灵活的换液方案。
mTeSR™1
配方:
无血清
应用:
无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。
特点/优势:
- 已在60多个国家用于维持数千株人ES和iPS细胞系，超过10年。
- 含有预筛选的牛血清白蛋白（BSA），可稳定培养基、促进脂质/营养运输，并保护细胞培养免受毒素和应激伤害。
- 众多已发表hPSCs谱系特异性分化方案的首选维持培养基。
mTeSR Without Phenol Red
配方:
无血清
应用:
无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。
特点/优势:
- 已在60多个国家用于维持数千株人ES和iPS细胞系，超过10年。
- 含有预筛选的牛血清白蛋白（BSA），可稳定培养基、促进脂质/营养运输，并保护细胞培养免受毒素和应激伤害。
- 众多已发表hPSCs谱系特异性分化方案的首选维持培养基。
TeSR™-E8™
配方:
无动物成分；无血清
应用:
无饲养层的人 ES 和 iPS 细胞的维持与扩增。
特点/优势:
- 最前沿的无动物源成分（Animal component-free，ACF）的配方。
- 仅包含维持人多能干细胞（hPSC）所需的8种最关键成分。
RSeT™ Feeder-Free Medium
配方:
无血清
应用:
将激发态的人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）回转为类原始态的状态，并在低氧条件下维持其类原始态的状态。
特点/优势:
- 无饲养层依赖的培养系统，可减少固有变异性、成本及饲养层制备的负担。
- 无血清配方，包含预筛选的高质量成分，确保结果的可重复性。
- 有效促进高效率地回转为类原始态的状态，具有稳定的圆顶状（domed）形态、原始态基因表达谱，以及低水平的自发性分化，无需外源基因。
- 无需添加bFGF，即可维持类原始态多能性性。
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cGMP级人多能干细胞（hPSC）维持培养基
在进行 hPSC 研究时，着眼于临床应用。我们稳定的无饲养层 hPSC 维持培养基 mTeSR™ Plus，现已按照相关 cGMP（现行药品生产质量管理规范） 要求，在经过认证的质量管理体系下进行生产和检测。如需了解更多关于法规合规的信息，请访问 STEMCELL 官网。
mTeSR™Plus 与其他维持培养基有何不同？
mTeSR™ Plus 是在 mTeSR™1 配方基础上设计的升级版本。该版本包含更稳定的成分（包括 FGF2），与其他培养基不同，它具备增强的缓冲能力，可减少培养基的酸化，从而在隔天换液操作时仍能保持细胞质量。
优势:
- 增强的缓冲系统和稳定的FGF2有助于在更灵活的换液方案下维持细胞质量。
- 支持更优的培养形态和细胞生长特性。
- 搭配 CloneR™ 使用时，可显著提高单细胞存活率。
- 与现有的基因组编辑和分化方案完全兼容。
- 按照相关cGMP规范生产，实现从基础研究到药物和细胞治疗开发的无缝过渡。
了解更多关于mTeSR™ Plus的信息，并在您自己的实验室中试用。
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胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）的稳定分化具有一定挑战性。我们推荐使用我们的 STEMdiff™ 产品系列，以实现最佳且可重复的分化效果。
CryoStor® CS10
配方:
符合cGMP标准生产、无动物成分、无血清
应用:
用于人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）的冷冻保存
特点/优势:
- 无动物成分。
- 在长期保存后可维持较高的细胞活力，并最大限度提高细胞恢复效果。
mFreSR™
配方:
无血清
应用:
用于人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）的冷冻保存
特点/优势:
- 针对人多能干细胞（hPSCs）以聚集体形式保存进行了优化。
- 解冻效率高于传统含血清培养基的所报道的水平。
FreSR™-S
配方:
无动物成分；无血清
应用:
用于人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）单细胞状态下的冷冻保存。
特点/优势:
- 无动物成分
- 针对单细胞悬液状态的细胞冷冻保存进行了优化。
- 解冻效率高于传统含血清培养基的所报道的水平。
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ReproTeSR™ 重编程培养基
配方:
无血清、无异源成分（Xeno-Free）
应用:
用于从成纤维细胞、尿源性细胞以及血液来源细胞（如 CD34⁺ 或红系祖细胞）中生成人诱导多能干细胞（iPS）
特点/优势:
- 成分明确的无饲养层配方，有助于高效、可重复地生成人 iPS 细胞。
- 快速生高质量的具有典型 iPS 细胞形态的大克隆，便于识别与亚克隆操作，从而轻松建立 iPS 细胞系。
- 可无缝整合至 STEMCELL 的相关产品体系中，适用于重编程前的细胞准备以及 iPS 细胞生成后的维持与分化。
TeSR™-E7™ 重编程培养基
配方:
无血清；无异源成分（Xeno-Free）；无动物成分
应用:
在无饲养细胞的条件下生成人诱导多能干细胞（iPS）
特点/优势:
- 预筛选的组分确保形成高质量的 iPS 细胞克隆形态，便于识别和手动挑选克隆。
- 降低分化和成纤维细胞的生长，有助于快速建立均一的 iPS 细胞培养体系。
- 无饲养层、成分明确的配方，有助于高效、可重复地生成人 iPS 细胞。
红系祖细胞重编程试剂盒
配方:
无动物成分；无血清
应用:
从外周血中分离并扩增红系祖细胞，并将其进一步重编程为诱导多能干细胞（iPS）。
特点/优势:
- 针对从外周血样本扩增的红系祖细胞的富集、扩增及重编程进行了优化。
- 与传统hES细胞培养基相比，具有更高的重编程效率和更高的 iPS 细胞克隆形成率。
- 快速生成高质量的具有典型 iPS 细胞形态的大克隆，有助于识别与亚克隆操作。
- 可与TeSR™和 STEMdiff™ 产品无缝衔接，用于iPS细胞系的后续维持与分化。
CD34+祖细胞重编程试剂盒
配方:
无血清
应用:
从外周血中分离并扩增CD34+祖细胞，并将其进一步重编程为诱导多能干细胞（iPS）。
特点/优势:
- 针对从外周血样本扩增的CD34+祖细胞的富集、扩增及重编程进行了优化。
- 与传统hES细胞培养基相比，具有更高的重编程效率和更高的 iPS 细胞克隆形成率。快速生成高质量的具有典型 iPS 细胞形态的大克隆，有助于识别与亚克隆操作。
- 可与 TeSR™ 和 STEMdiff™ 产品无缝衔接，用于iPS细胞系的后续维持与分化。
ReproRNA™-OKSGM
应用:
将成体细胞（如成纤维细胞）重编程为诱导多能干细胞细胞（iPS）。
特点/优势:
- 非病毒、非整合载体系统。
- 自我复制型载体，仅需单次转染。
- 载体包含所有重编程因子。
- 成纤维细胞的重编程效率与Sendai病毒相当。
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mTeSR™3D
配方:
无血清
应用:
用于在3D悬浮培养中以细胞团形式扩增和放大未分化的人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）。
特点/优势:
- 基于mTeSR™配方，专为人多能干细胞（hPSC）大规模扩增设计。
- 采用分批补料（Fed-batch）培养系统，简化工作流程。在2–3 周内可扩增至 10⁹ 数量级的高质量、未分化的人多能干细胞。
TeSR™-E8™3D
配方:
无动物成分
应用:
用于在3D悬浮培养中以细胞团形式扩增和放大未分化的人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）。
特点/优势:
- 基于TeSR™-E8™配方，配方经过优化，适用于无动物成份，低蛋白条件下hPSC大规模悬浮培养，ACF条件。
- 采用分批补料（Fed-batch）培养系统，简化操作流程。在2–3 周内可扩增至 10⁹数量级的高质量、未分化的人多能干细胞。
TeSR™ AOF 3D
配方:
无动物源成分（Animal Origin-Free）
应用:
用于在3D悬浮培养中以细胞团形式扩增和放大未分化的人胚胎干细胞（ES）和诱导多能干细胞（iPS）。
特点/优势:
- 基于TeSR™-AOF配方，适用于在整个生产流程中（包括二级原材料）完全不使用动物源成分的 hPSC 扩增。
- 采用分批补料（Fed-batch）培养系统，简化操作流程。
- 在2–3 周内可扩增至 10⁹数量级的高质量、未分化的人多能干细胞。
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TeSR™培养基中细胞因子的作用及其对hPSC培养的影响是什么？
- 促进细胞存活与增殖，同时抑制特定谱系（如心肌细胞）的分化该成分，存在于所有TeSR™培养基中（TeSR™-E5除外）。
- 是维持hPSC自我更新和扩增的关键细胞因子，存在于TeSR™重编程培养基（ReproTeSR™、TeSR™-E7™）及维持培养基（,,）中
- 会抑制重编程过程，对维持hPSC多能性至关重要。TGFβ存在于全部三种TeSR™维持培养基（,,）中。
品牌历史
2006年，威斯康星大学James Thomson实验室的Tenneille Ludwig博士及其同事首次报道了在成分完全确定、无饲养层培养条件下建立的胚胎干细胞系1,2。这种首个成分明确的培养基显著改进了人胚胎干细胞培养体系，并以mTeSR™1商品名上市，成为发表文献最多无饲养层培养基，被1100余篇同行评审论文引用。
随后，基于相同配方的无外源动物成分（xeno-free）培养基——TeSR™2 推出。
2012年，发布了名为 TeSR™-E8™ 的低蛋白维持培养基，该配方基于James Thomson实验室陈国凯博士发表的E8配方3开发，仅包含维持hPSC所需的核心成分，为hPSC维持培养提供了更简化的培养方案。
近年来，STEMCELL Technologies公司进一步推出mTeSR™ Plus（2019年）和TeSR™-AOF（无动物源成分，2021年）。作为无饲养层维持培养基，mTeSR™ Plus是一种改进的无饲养层维持培养基，增强了 pH 缓冲能力，支持无需周末换液的培养方案。TeSR™-AOF是一种无动物源成分（Animal Origin-Free）培养基，生产全过程（包括二级原材料）中无动物源成分为用户提供病毒安全问题保证。mTeSR™ Plus、TeSR™-AOF和mTeSR™1均遵循现行cGMP规范生产。
除 TeSR™ 维持培养基外，STEMCELL Technologies还开发了支持多能干细胞研究各阶段的 TeSR™ 系列产品包括：成纤维细胞重编程优化培养基（TeSR™-E7™）、血细胞与成纤维细胞重编程培养基（ReproTeSR™）、分化培养基（TeSR™-E6和TeSR™-E5）以及冻存液（mFreSR™和FreSR™-S）
科研资源
专家研讨：hPSC质量保障的挑战
聆听全球专家的见解，探讨影响人多能干细胞应用的关键问题。本系列网络研讨会由 STEMCELL Technologies 与 Nature Research 合作推出。
Key Applications
Toxicity Testing with Human iPS Cells
Jagtap S, Meganathan K, Gaspar J, Wagh V, Winkler J, Hescheler J and Sachinidis A (2011), Cytosine arabinoside induces ectoderm and inhibits mesoderm expression in human embryonic stem cells during multilineage differentiation, Br J Pharmacol. Vol. 162, pp. 1743-56.
Kleinstreuer NC, Smith AM, West PR, Conard KR, Fontaine BR, Weir-Hauptman AM, Palmer JA, Knudsen TB, Dix DJ, Donley ELR and Cezar GG (2011), Identifying developmental toxicity pathways for a subset of ToxCast chemicals using human embryonic stem cells and metabolomics, Toxicology and Applied Pharmacology., November, 2011. Vol. 257(1), pp. 111-121.
Liang P, Lan F, Lee AS, Gong T, Sanchez-Freire V, Wang Y, Diecke S, Sallam K, Knowles JW, Wang PJ, Nguyen PK, Bers DM, Robbins RC and Wu JC (2013), Drug screening using a library of human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes reveals disease-specific patterns of cardiotoxicity. Circulation., April, 2013. Vol. 127(16), pp. 1677-1691.
Liu J, Sun N, Bruce MA, Wu JC and Butte MJ (2012), Atomic Force Mechanobiology of Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes, PLoS ONE., May, 2012. Vol. 7(5), pp. e37559.
Mehta A, Chung YY, Ng A, Iskandar F, Atan S, Wei H, Dusting G, Sun W, Wong P and Shim W (2011), Pharmacological response of human cardiomyocytes derived from virus-free induced pluripotent stem cells, Cardiovascular Research., September, 2011. Vol. 91(4), pp. 577-586.
Kleinstreuer NC, Smith AM, West PR, Conard KR, Fontaine BR, Weir-Hauptman AM, Palmer JA, Knudsen TB, Dix DJ, Donley ELR and Cezar GG (2011), Identifying developmental toxicity pathways for a subset of ToxCast chemicals using human embryonic stem cells and metabolomics, Toxicology and Applied Pharmacology., November, 2011. Vol. 257(1), pp. 111-121.
Liang P, Lan F, Lee AS, Gong T, Sanchez-Freire V, Wang Y, Diecke S, Sallam K, Knowles JW, Wang PJ, Nguyen PK, Bers DM, Robbins RC and Wu JC (2013), Drug screening using a library of human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes reveals disease-specific patterns of cardiotoxicity. Circulation., April, 2013. Vol. 127(16), pp. 1677-1691.
Liu J, Sun N, Bruce MA, Wu JC and Butte MJ (2012), Atomic Force Mechanobiology of Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes, PLoS ONE., May, 2012. Vol. 7(5), pp. e37559.
Mehta A, Chung YY, Ng A, Iskandar F, Atan S, Wei H, Dusting G, Sun W, Wong P and Shim W (2011), Pharmacological response of human cardiomyocytes derived from virus-free induced pluripotent stem cells, Cardiovascular Research., September, 2011. Vol. 91(4), pp. 577-586.
Differentiating to Hematopoietic Cells
Brown ME, Rondon E, Rajesh D, Mack A, Lewis R, Feng X, Zitur LJ, Learish RD and Nuwaysir EF (2010), Derivation of induced pluripotent stem cells from human peripheral blood T lymphocytes, PLoS One. Vol. 5, pp. e11373.
Carpenter L, Malladi R, Yang C-T, French A, Pilkington KJ, Forsey RW, Sloane-Stanley J, Silk KM, Davies TJ, Fairchild PJ, Enver T and Watt SM (2011), Human induced pluripotent stem cells are capable of B-cell lymphopoiesis, Blood., April, 2011. Vol. 117(15), pp. 4008-4011.
Dravid G, Zhu Y, Scholes J, Evseenko D and Crooks GM (2011), Dysregulated gene expression during hematopoietic differentiation from human embryonic stem cells, Mol Ther. Vol. 19, pp. 768-81.
Niwa A, Heike T, Umeda K, Oshima K, Kato I, Sakai H, Suemori H, Nakahata T and Saito MK (2011), A novel serum-free monolayer culture for orderly hematopoietic differentiation of human pluripotent cells via mesodermal progenitors, PLoS One. Vol. 6, pp. e22261.
Salvagiotto G, Burton S, Daigh CA, Rajesh D, Slukvin II and Seay NJ (2011), A Defined, Feeder-Free, Serum-Free System to Generate In Vitro Hematopoietic Progenitors and Differentiated Blood Cells from hESCs and hiPSCs, PLoS ONE., March, 2011. Vol. 6(3), pp. e17829.
Carpenter L, Malladi R, Yang C-T, French A, Pilkington KJ, Forsey RW, Sloane-Stanley J, Silk KM, Davies TJ, Fairchild PJ, Enver T and Watt SM (2011), Human induced pluripotent stem cells are capable of B-cell lymphopoiesis, Blood., April, 2011. Vol. 117(15), pp. 4008-4011.
Dravid G, Zhu Y, Scholes J, Evseenko D and Crooks GM (2011), Dysregulated gene expression during hematopoietic differentiation from human embryonic stem cells, Mol Ther. Vol. 19, pp. 768-81.
Niwa A, Heike T, Umeda K, Oshima K, Kato I, Sakai H, Suemori H, Nakahata T and Saito MK (2011), A novel serum-free monolayer culture for orderly hematopoietic differentiation of human pluripotent cells via mesodermal progenitors, PLoS One. Vol. 6, pp. e22261.
Salvagiotto G, Burton S, Daigh CA, Rajesh D, Slukvin II and Seay NJ (2011), A Defined, Feeder-Free, Serum-Free System to Generate In Vitro Hematopoietic Progenitors and Differentiated Blood Cells from hESCs and hiPSCs, PLoS ONE., March, 2011. Vol. 6(3), pp. e17829.
Differentiating to Definitive Endoderm
Hannoun Z, Fletcher J, Greenhough S, Medine C, Samuel K, Sharma R, Pryde A, Black JR, Ross JA, Wilmut I, Iredale JP and Hay DC (2010), The comparison between conditioned media and serum-free media in human embryonic stem cell culture and differentiation, Cell Reprogram. Vol. 12, pp. 133-40.
Jaramillo M and Banerjee I (2012), Endothelial Cell Co-culture Mediates Maturation of Human Embryonic Stem Cell to Pancreatic Insulin Producing Cells in a Directed Differentiation Approach, Journal of Visualized Experiments., March, 2012. (61)
Miki T, Ring A and Gerlach J (2011), Hepatic differentiation of human embryonic stem cells is promoted by three-dimensional dynamic perfusion culture conditions, Tissue Eng Part C Methods. Vol. 17, pp. 557-68.
Mou H, Zhao R, Sherwood R, Ahfeldt T, Lapey A, Wain J, Sicilian L, Izvolsky K, Lau FH, Musunuru K, Cowan C and Rajagopal J (2012), Generation of Multipotent Lung and Airway Progenitors from Mouse ESCs and Patient-Specific Cystic Fibrosis iPSCs, Cell Stem Cell., April, 2012. Vol. 10(4), pp. 385-397.
Spence JR, Mayhew CN, Rankin SA, Kuhar MF, Vallance JE, Tolle K, Hoskins EE, Kalinichenko VV, Wells SI, Zorn AM, Shroyer NF and Wells JM (2011), Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro, Nature., February, 2011. Vol. 470(7332), pp. 105-109.
Jaramillo M and Banerjee I (2012), Endothelial Cell Co-culture Mediates Maturation of Human Embryonic Stem Cell to Pancreatic Insulin Producing Cells in a Directed Differentiation Approach, Journal of Visualized Experiments., March, 2012. (61)
Miki T, Ring A and Gerlach J (2011), Hepatic differentiation of human embryonic stem cells is promoted by three-dimensional dynamic perfusion culture conditions, Tissue Eng Part C Methods. Vol. 17, pp. 557-68.
Mou H, Zhao R, Sherwood R, Ahfeldt T, Lapey A, Wain J, Sicilian L, Izvolsky K, Lau FH, Musunuru K, Cowan C and Rajagopal J (2012), Generation of Multipotent Lung and Airway Progenitors from Mouse ESCs and Patient-Specific Cystic Fibrosis iPSCs, Cell Stem Cell., April, 2012. Vol. 10(4), pp. 385-397.
Spence JR, Mayhew CN, Rankin SA, Kuhar MF, Vallance JE, Tolle K, Hoskins EE, Kalinichenko VV, Wells SI, Zorn AM, Shroyer NF and Wells JM (2011), Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro, Nature., February, 2011. Vol. 470(7332), pp. 105-109.
Scale-Up and Bioreactor Culture
Krawetz R, Taiani JT, Liu S, Meng G, Li X, Kallos MS and Rancourt DE (2010), Large-Scale Expansion of Pluripotent Human Embryonic Stem Cells in Stirred-Suspension Bioreactors, Tissue Engineering Part C: Methods., August, 2010. Vol. 16(4), pp. 573-582.
Oh SKW, Chen AK, Mok Y, Chen X, Lim U-M, Chin A, Choo ABH and Reuveny S (2009), Long-term microcarrier suspension cultures of human embryonic stem cells, Stem Cell Research., May, 2009. Vol. 2(3), pp. 219-230.
Olmer R, Haase A, Merkert S, Cui W, Palecek J, Ran C, Kirschning A, Scheper T, Glage S, Miller K, Curnow EC, Hayes ES and Martin U (2010), Long term expansion of undifferentiated human iPS and ES cells in suspension culture using a defined medium, Stem Cell Res. Vol. 5, pp. 51-64.
Singh H, Mok P, Balakrishnan T, Rahmat SN and Zweigerdt R (2010), Up-scaling single cell-inoculated suspension culture of human embryonic stem cells, Stem Cell Res. Vol. 4, pp. 165-79.
Zweigerdt R, Olmer R, Singh H, Haverich A and Martin U (2011), Scalable expansion of human pluripotent stem cells in suspension culture, Nature Protocols. Vol. 6(5), pp. 689-700.
Oh SKW, Chen AK, Mok Y, Chen X, Lim U-M, Chin A, Choo ABH and Reuveny S (2009), Long-term microcarrier suspension cultures of human embryonic stem cells, Stem Cell Research., May, 2009. Vol. 2(3), pp. 219-230.
Olmer R, Haase A, Merkert S, Cui W, Palecek J, Ran C, Kirschning A, Scheper T, Glage S, Miller K, Curnow EC, Hayes ES and Martin U (2010), Long term expansion of undifferentiated human iPS and ES cells in suspension culture using a defined medium, Stem Cell Res. Vol. 5, pp. 51-64.
Singh H, Mok P, Balakrishnan T, Rahmat SN and Zweigerdt R (2010), Up-scaling single cell-inoculated suspension culture of human embryonic stem cells, Stem Cell Res. Vol. 4, pp. 165-79.
Zweigerdt R, Olmer R, Singh H, Haverich A and Martin U (2011), Scalable expansion of human pluripotent stem cells in suspension culture, Nature Protocols. Vol. 6(5), pp. 689-700.
Differentiating to Cardiomyocytes
Elliott DA, Braam SR, Koutsis K, Ng ES, Jenny R, Lagerqvist EL, Biben C, Hatzistavrou T, Hirst CE, Yu QC, Skelton RJ, Ward-van Oostwaard D, Lim SM, Khammy O, Li X, Hawes SM, Davis RP, Goulburn AL, Passier R, Prall OW, Haynes JM, Pouton CW, Kaye DM, Mummery CL, Elefanty AG and Stanley EG (2011), NKX2-5(eGFP/w) hESCs for isolation of human cardiac progenitors and cardiomyocytes, Nat Methods. Vol. 8, pp. 1037-40.
Hazeltine LB, Simmons CS, Salick MR, Lian X, Badur MG, Han W, Delgado SM, Wakatsuki T, Crone WC, Pruitt BL and Palecek SP (2012), Effects of Substrate Mechanics on Contractility of Cardiomyocytes Generated from Human Pluripotent Stem Cells, International Journal of Cell Biology. Vol. 2012, pp. 1-13.
Lian X, Hsiao C, Wilson G, Zhu K, Hazeltine LB, Azarin SM, Raval KK, Zhang J, Kamp TJ and Palecek SP (2012), Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling, Proceedings of the National Academy of Sciences., July, 2012. Vol. 109(27), pp. 10759-10760.
Mehta A, Chung YY, Ng A, Iskandar F, Atan S, Wei H, Dusting G, Sun W, Wong P and Shim W (2011), Pharmacological response of human cardiomyocytes derived from virus-free induced pluripotent stem cells, Cardiovascular Research., September, 2011. Vol. 91(4), pp. 577-586.
Zhang H, Zou B, Yu H, Moretti A, Wang X, Yan W, Babcock JJ, Bellin M, McManus OB, Tomaselli G, Nan F, Laugwitz K-L and Li M (2012), Modulation of hERG potassium channel gating normalizes action potential duration prolonged by dysfunctional KCNQ1 potassium channel, Proceedings of the National Academy of Sciences., July, 2012. Vol. 109(29), pp. 11866-11871.
Hazeltine LB, Simmons CS, Salick MR, Lian X, Badur MG, Han W, Delgado SM, Wakatsuki T, Crone WC, Pruitt BL and Palecek SP (2012), Effects of Substrate Mechanics on Contractility of Cardiomyocytes Generated from Human Pluripotent Stem Cells, International Journal of Cell Biology. Vol. 2012, pp. 1-13.
Lian X, Hsiao C, Wilson G, Zhu K, Hazeltine LB, Azarin SM, Raval KK, Zhang J, Kamp TJ and Palecek SP (2012), Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling, Proceedings of the National Academy of Sciences., July, 2012. Vol. 109(27), pp. 10759-10760.
Mehta A, Chung YY, Ng A, Iskandar F, Atan S, Wei H, Dusting G, Sun W, Wong P and Shim W (2011), Pharmacological response of human cardiomyocytes derived from virus-free induced pluripotent stem cells, Cardiovascular Research., September, 2011. Vol. 91(4), pp. 577-586.
Zhang H, Zou B, Yu H, Moretti A, Wang X, Yan W, Babcock JJ, Bellin M, McManus OB, Tomaselli G, Nan F, Laugwitz K-L and Li M (2012), Modulation of hERG potassium channel gating normalizes action potential duration prolonged by dysfunctional KCNQ1 potassium channel, Proceedings of the National Academy of Sciences., July, 2012. Vol. 109(29), pp. 11866-11871.
参考文献
- Ludwig TE et al. (2006) Feeder-independent culture of human embryonic stem cells. Nat Methods 3(8): 637–46.
- Ludwig TE et al. (2006) Derivation of human embryonic stem cells in defined conditions. Nat Biotechnol 24(2): 185–7.
- Chen G et al. (2011) Chemically defined conditions for human iPSC derivation and culture. Nat Methods 8(5): 424–9.
