神经类器官标准操作流程
神经类器官标准操作流程
脑类器官是体外3D模型,其细胞组成和结构组织能代表发育中的人脑。使用STEMdiff™脑类器官试剂盒可从人多能干细胞(hPSC)诱导生成脑类器官,整个过程基于Madeline Lancaster发表的实验流程1,2并经过优化,用以提高类器官的生成效率和实验重现性。该流程描述了如何从hPSC诱导生成脑类器官,这些脑类器官具有明显的边界,紧密的细胞排列,和小于10%的分化区域。
实验前准备: 无菌条件下准备STEMdiff™脑类器官培养基。在室温(15 - 25°C)下解冻STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplements,混合均匀。如果不立即使用,将添加物分装,并在-20℃下保存。注意在产品有效期内使用添加物。分装后的培养基重新解冻后,需马上使用。切忌反复冻融。
第一阶段:类胚体的形成(第0-5天)
实验材料
- STEMdiff™脑类器官试剂盒(产品号 #08570)
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement A
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 1
- D-PBS(不含Ca++与Mg++)(PBS,产品号 #37350)
- 枪头(如Corning® Filtered Pipette Tips,产品号 #38034)
- 移液枪(如Corning® Lambda™ Plus Pipettor,产品号 #38058)
- 温和细胞解离试剂(GCDR,产品号 #07174)
操作流程
注意事项
- 本实验流程适用于从一个6孔板的单孔的hPSC培养物形成类胚体(EBs)。如果使用其他的培养器皿,请对应的调整试剂用量。使用前,将培养器皿、培养基和其它试剂预热至室温(15 - 25°C)。
- 使用可以传代的hPSC培养体系,这时大部分细胞集落较大、细胞排列紧密、并具有多层致密的中心。当满板程度不超过70%-80%并具有小于10%的分化比例时对hPSC进行传代。
第0天
- 准备EB Formation Medium,将10 mL的STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement A到40 mL的 STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 1中。
- 使用显微镜观察确定分化的区域。通过用移液管尖端刮擦或通过抽吸去除分化区域。
- 吸除培养基,使用PBS润洗细胞。
- 吸去润洗液,加入1 mL的GCDR。
- 37°C孵育8 - 10分钟。
注意事项: 请注意对于不同的细胞系或者使用不同的无酶细胞传代试剂,孵育时间也会有所不同。 - 使用1 mL移液枪,轻轻重悬细胞,上下缓慢吹打3 - 5次。将细胞悬液转移至50mL离心管中。
- 制备EB Seeding Medium,在EB Formation Medium中加入10 µM的Y-27632。
- 加入1 mL EB Seeding Medium润洗培养孔,一并加入离心管中。
- 300 x g,离心5分钟。
- 弃去上清。加入1 - 2 mL的EB Seeding Medium重悬细胞。
- 使用台盼蓝(Trypan Blue)和细胞计数板进行细胞计数。
- 计算获得90,000个细胞/mL所需的细胞体积;将此体积的细胞添加到适当体积的EB Seeding Medium中。
- 在96-well round-bottom ultra-low attachment plate的每孔加入步骤12中制备的100 μL细胞悬浮液(9000个细胞/孔)。
注意事项: 为了提高EB的形成效率和重现性,建议使用多通道移液器进行此步骤。 - 在37℃下孵育96孔板。24小时内不要移动培养板。24小时后,应观察到小EB的形成(直径100 - 200 μm左右)。
第2 - 5天
- 在第2天和第4天,每孔加入100 μL的EB Formation Medium。这一步建议使用多通道移液器。37℃下培养。
- 第5天,在显微镜下观察EBs。EB的直径应大于300 μm(通常为400-600 μm),并表现出圆形和光滑的边缘。这些EBs可以进行第二阶段的操作。
第二阶段:诱导分化(第5-7天)
实验材料
- STEMdiff™脑类器官试剂盒(产品号 #08570):
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement B
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 1
- 24-well ultra-low attachment plate(如Corning® 产品号 #3473)
- 注意事项: 如果没有ultra-low attachment plate,可使用 Anti-Adherence Rinsing Solution(产品号 #07010)对普通的 tissue culture-treated cultureware进行预处理,降低细胞黏附。
- 移液枪(如Corning® Lambda™ Plus Pipettor,产品号 #38059)
- Wide-bore 200 μL枪头
操作流程
第5天
注意事项: 实验开始前需预热培养器皿,培养基和其它实验试剂到室温(15 - 25℃)。- 准备Induction Medium,将0.5 mL的STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement B到49.5 mL的STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 1中。
- 在24-well ultra-low attachment plate的每孔加入0.5 mL Induction Medium。
- 在24孔板中每孔加入1 - 2个EBs,如下:
a. 使用wide-bore 200 µL枪头,从96孔板(第一阶段)中每孔吸取50 µL液体获取EB。
b. 小心的移除将大部分液体,将EB留在枪头内。
c. 将EB分配到含有Induction Medium的24孔板中。
注意事项: 在孵箱中前后晃动培养板3 - 4次,将EB均匀的分布在孔中。接触到一起的EB更容易合并。如果合并的EB数量较多,则每孔只加入一个EB。 - 37℃孵育48小时。在Induction Medium中生长两天后,EBs应该是肉眼可见的(直径500 - 800 μm左右),并具有光滑,半透明的边缘。这说明神经上皮的形成。这些EBs可以进入第三阶段的培养。
第三阶段:扩张(第7 - 10天)
实验材料
- STEMdiff™脑类器官试剂盒(产品号 #08570):
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement C
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement D
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 2
- Corning® Matrigel® hESC-Qualified Matrix (Corning® 产品号 #354277)
- Organoid Embedding Sheet(产品号 #08579)
- Sterile 100 mm dish(如Culture Dish,Non-Treated,产品号 #38045)
- 移液枪(如Corning® Lambda™ Plus Pipettor,产品号 #38059)
操作流程
第7天
- 将Matrigel®在2 - 8°C,冰上解冻1 - 2小时。
注意: 解冻足够的Matrigel®,保证每个EB具有15 μL Matrigel®(如96孔x 15 μL/孔= 1.44 mLMatrigel®)。将Matrigel®保存在冰上,以防止过早凝固。所有与Matrigel®接触的塑料器皿在使用前应在-20°C下至少冷冻30分钟。 - 准备Expansion Medium,将0.25 mL STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement C和0.5 mL STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement D加入24.25 mL STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 2中。
- 在一个无菌的100 mm培养皿中加入一片无菌的Organoid Embedding Shee。
注意事项: 也可以用Parafilm®创建一个embedding sheet。 - 使用wide-bore 200 µL枪头,从24孔板的一个孔中吸取25 - 50 μL的培养基+EB,并转移到embedding sheet上。重复此步骤,直到将12 - 16 EBs放入embedding sheet。
注意事项: 每次操作不超过12-16个EB;这将防止EB干燥和Matrigel®过早凝固。 - 使用一个标准的200 µL枪头,吸除除每个EB外多余的培养基。枪头朝向EB的另外一侧,避免接触到EB。
- 使用带有200 µL标准枪头的移液枪,每个EB上加入15 µL Matrigel®。
- 使用一个新的冷的200 µL移液器吸头,重新将EB定位到液滴的中心。
- 37°C孵育30分钟,等待Matrigel®凝固。
- 使用无菌镊子提起含有Matrigel®凝固液滴的embedding sheet。
- 将embedding sheet对准一个6-well ultra-low adherent plate的一个培养孔。使用1 mL移液枪,吸取Expansion Medium并轻轻地将Matrigel®液滴从embedding sheet上冲到培养孔中。每孔使用3 mL Expansion Medium。重复上述步骤,每孔可培养12 - 16个Matrigel®包埋的类器官。
- 37℃下孵育3天。包埋的类器官会发育扩展生成神经上皮结构,在EB表面表现为出芽状。这些EBs可开始进行第四阶段的培养。
第四阶段:类器官成熟(第10 - 40+天)
实验材料
- TEMdiff™脑类器官试剂盒(产品号 #08570):
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement E
- STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 2
- mL或10 mL移液管(如Falcon® Serological Pipettes,5 mL 产品号 #38003或Falcon® Serological Pipettes,10 mL,产品号 #38004)
操作流程
第10天
- 准备Maturation Medium,将2 mL的STEMdiff™ Cerebral Organoid Supplement E加入98 mL的STEMdiff™ Cerebral Organoid Basal Medium 2中。
- 使用5 mL或10 mL的移液管,轻轻的吸除培养孔中的培养基。不要碰到Matrigel®包埋的类器官。
- 每孔更换3 mL新鲜的Maturation Medium。
- 将含有类器官的培养板置于37°C孵箱的水平摇床上。INFORS HT Celltron orbital shaker,按照表1调整转速(rpm)。对于其他摇床型号,请使用以下公式计算转速。
表1. INFORS HT Celltron Orbital Shaker的推荐摇床速度,适用于各种培养器皿
培养器皿*培养基体积(mL)推荐的转速(rpm)相对离心力(RCF)† (g)6-well plate
60 mm dish3.0650.1180812-well plate1.5850.2019424-well plate1.01000.27950*我们推荐使用6孔板或12孔板。
†Calculated using throw (shaking diameter) of 25 mm for the INFORS HT Celltron.
其中:
rpm=转速(每分钟转数)
RCF=相对离心力(g),表2中提供了各种培养器皿的相对离心力。
throw = shaking diameter (mm), as specified by manufacturer - 每隔3 - 4天进行一次全换液,具体如下:
a.倾斜培养器皿。
b.使用5 mL移液管慢慢吸除培养基。
c.加入3 mL/孔的新鲜培养基。
d.将培养板置于37°C孵箱的水平摇床上。 - 在Maturation Medium中培养30天后,类器官会长到3 - 4 mm的大小。
- 第10天:器官显示萌芽形态,说明神经上皮的扩张。
- 第15天:扩张的神经上皮出芽合并,类器官形成一个致密的中心。
- 第20天:类器官的直径将超过750 μm;可观察到小的神经花环状结构。
- 第30天:类器官直径超过1 mm,并显示出带有致密中心的组织结构。
- 第40天:类器官的直径约为3 - 5 mm。这时,类器官中心部位致密且深,并具有皮层细胞的分布。发育不好的类器官没有形成清晰的边界、大小上在培养至40天时也会小于1 mm。PAX-6+的祖细胞被发现位于脑室带样区域存在,并且明显与TUJ-1+的神经元分开。
- 0天后,可使用STEMdiff™脑类器官成熟试剂盒(产品号 #08571)继续培养脑类器官。
参考文献
- Lancaster et al. (2013) Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature 501(7467): 373–9.
- Lancaster et al. (2014) Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science 345(6194): 1247125.

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